Министерство сельского хозяйства и продовольствия республики беларусь

ТЕМА: Наблюдение защитных и компенсаторных реакций 

организма. 

О П Ы Т  1 

Принадлежности  опыта:  вивисекционный  стол,  ножницы,  пинцеты, 

вата, аммиак, аппарат для искусственного дыхания, кролик, лигатуры. 

Цель опыта: Наблюдение защитных реакций (рефлексов) организма. 

Методика опыта и результаты. У кролика подсчитывают дыхание до 

опыта.  Затем  к  носу  (не  касаясь  его)  подносят  на  несколько  секунд  вату, 

смоченную аммиаком. При этом отмечается задержка дыхания (апное) на 

некоторое время. 

Задержка дыхания от действия аммиака на слизистую оболочку ды-

хательных путей и является защитной реакцией организма на необычный 

раздражитель. 

 

ТЕМА: Роль внешней среды в этиологии. 

О П Ы Т  1 

Принадлежности  опыта:  три  широкогорлые  колбы,  каждая  вмести-

мостью около 100 мл; на дно колб кладется немного ваты (0,5 г) для пре-

дупреждения намокания наружных покровов мыши мочой. Три пробирки, 

герметически закрывающие колбы. Три взрослые белые мыши одинаково-

го веса. Химические термометры. Сосуд с теплой водой (+40 - +43

0

С). Со-

суд с холодной водой (+3 - +5

0

С). Сосуд со снегом или кусочком льда. 

Цель опыта: выяснить роль внешней среды (температуры) при дей-

ствии кислородной недостаточности (гипоксемии). 

Методика опыта. Три белые мыши, каждая весом около 20 г, поме-

щаются  в  три  широкогорлые  колбы  емкостью  примерно  100  мл.  Колбы 

одновременно герметически закрываются пробками. Далее одна из колб на 

две трети своего объема помещается в сосуд с водой, подогретой до +40

0

С. 

Вторая колба ставится в холодную воду с температурой +5

0

С. Третья кол-

ба оставляется при комнатной температуре +18 –20

0

С. Температура теплой 

и холодной воды поддерживается на одном уровне во время опыта и кон-

тролируется химическими термометрами. Студенты ведут подробные про-

токолы опыта. 

 

21 

Результаты  опыта.  При  перегревании  мышь  погибла  быстрее,  чем 

при охлаждении и при комнатной температуре. Различно и поведение жи-

вотных  при  разных  температурах.  Перегреваемая  мышь  проявляет  наи-

большие  признаки  возбуждения  (резкие  движения  –  двигательное  беспо-

койство,  одышка).  У  охлаждаемой  мыши  признаки  возбуждения  наблю-

даются  только  вначале,  а  потом  отсутствуют,  животное  сидит  спокойно, 

дышит ровно, медленно, глубоко. 

Основным патогенным раздражителем является кислородная недос-

таточность: животное погибает тем быстрее, чем быстрее оно израсходует 

находящееся  в  сосуде  количество  кислорода.  Величина  же  потребления 

кислорода определяется интенсивностью обменных процессов. Таким об-

разом,  первое  объяснение  результатов  этих  опытов  таково:  различие  во 

внешней картине болезни и сроках жизни при перегревании и охлаждении 

зависит от разной интенсивности обменных процессов в перегретом и ох-

лажденном  организмах.  При  охлаждении  мыши  интенсивность  ее  обмен-

ных  процессов,  после  некоторого  периода  повышения,  снижается,  и  дан-

ного количества кислорода этой мыши хватает на больший срок, чем той, 

которая находится при комнатной температуре. В отношении перегревае-

мой мыши ход рассуждения обратный. 

Проверка  газового  состава  воздуха  после  смерти  мышей  показыва-

ют,  что  охлаждавшаяся  мышь  погибает  при  концентрации  кислорода  в 

3,8%,  мышь  при  комнатной  температуре  погибает  при  7,2%  кислорода, а 

мышь перегревшаяся – при 8,2% кислорода. Как видно, чувствительность 

к  недостатку  кислорода  у  охлажденной  мыши  наименьшая. Понятно, что 

эта  мышь  и  жила  дольше  всех, так как  могла дольше расходовать кисло-

род, пока он достиг смертельной для нее концентрации – 3,8%. Наоборот, 

мышь,  перегретая  наиболее  чувствительна  к  недостатку  кислорода.  По-

этому смертельная для нее концентрация кислорода (8,2%) была достигну-

та скорее и мышь погибла раньше, мышь при комнатной температуре за-

нимает среднее положение. 

 

ТЕМА: Основные механизмы возникновения и развития  

                   патологических процессов (общий патогенез).    

Принадлежности  опытов:  лягушки,  препаровальные  дощечки,  пин-

цеты, ножницы, лигатуры, адреналин 1:1000, булавки, вата, шприцы, иглы. 

О П Ы Т   1 

Цель  опыта:  изучить  рефлекторный  механизм  действия  болезне-

творных (чрезвычайных) факторов на организм.  

Методика.  Лягушку  фиксируют  на  препаровальной  доске  спиной 

кверху.  В  области  бедра  продольно  разрезают  кожу,  раздвигают  мышцы 

бедра так, чтобы обнажился седалищный нерв (не повредив сосуды). Под 

седалищный нерв подводят две лигатуры и все бедро (кроме нерва) пере-

вязывают дважды и между лигатурами перерезают. 

 

22 

Лягушку  поворачивают  брюшком  кверху  и  обнажают  сердце.  Под-

считывают число сердечных сокращений (за 1 мин) до опыта, затем вводят 

шприцем в икроножную мышцу 0,2-0,3 мл адреналина 1:1000. Снова счи-

тают число сокращений сердца через 1-3-5 после введения адреналина. 

Результаты  опыта.  Изменение  работы  сердца  после  введения  адре-

налина  в  икроножную  мышцу  является  результатом  действия  его  на  ре-

цепторы этой мышцы. По рефлекторной дуге влияние передается на серд-

це - рефлекторный механизм действия. 

О П Ы Т  2 

Цель  опыта:  изучить  механизм  центрогенного  (автоматического) 

действия болезнетворных факторов на организм. 

Методика опыта. Лягушку децеребрируют путем обрезания верхней 

челюсти  за  глазами.  Обнажают  сердце,  подсчитывают  число  сокращений 

сердца за 1 мин. Затем на обнаженный мозг наносят 1-2 капли адреналина 

1:1000  и  снова  подсчитывают  число  сердечных  сокращений  через  1-2-3 

минуты. 

Результаты опыта: изменение работы сердца, после нанесения адре-

налина на мозг, указывает на действие адреналина по центрогенному ме-

ханизму. 

О П Ы Т  3 

Цель опыта: изучить механизм прямого (непосредственного) дейст-

вия (болезнетворных) факторов. 

Методика.  Лягушку  обездвиживают  путем  разрушения  спинного 

мозга,  фиксируют  на  препаровальной  доске  спиною  книзу,  обнажают 

сердце, вырезают его и помещают в фарфоровую чашку с 2-3 каплями р-ра 

Рингера для хладнокровных. Подсчитывают число сокращений сердца за 1 

мин  до  опыта,  наносят  1-2  капли  адреналина  на  сердце  и  считают  число 

сокращений через 1-3-5 мин. 

Результаты опыта. Изменение числа сердечных сокращений является 

результатом прямого (непосредственного) действия адреналина на сердце. 

 

ТЕМА: Реактивность организма в зависимости от  

                       функционального состояния ЦНС. 

Принадлежности опытов: четыре мыши, колбы на 100 и 200 мл, 1% 

раствор  тиопентала  натрия,  термостат,  пробка  резиновая  для  колбы,  на-

стойка йода, вата. 

ОПЫТ 1 

Цель опыта: изучить зависимость реактивности организма от функ-

ционального состояния центральной нервной системы. 

Методика  опыта.  Берут  две  мыши  одинакового  веса.  Одна  из  них 

наркотизируется путем подкожного введения 1% раствора тиопентала на-

трия в дозе 0,25 мл на 20 г веса мыши. Таким путем  изменяем функцио-

нальное состояние нервной системы. Обе мыши одновременно помещают-

 

23 

ся в термостат при температуре 38-40

0

С. Студенты наблюдают за поведе-

нием мышей, учитывают продолжительность их жизни.  

Результаты и их обсуждение. Опыт показывает, что наркоз уменьша-

ет  продолжительность  жизни  мыши  при  перегревании.  Это  объясняется 

тем,  что  наркоз  как  и  снотворные,  применяемые  с  целью  тарапии  сном, 

усиливая охранительное торможение, нередко угнетают и защитные меха-

низмы, в связи с чем патологические реакции могут не только ослабевать, 

но иногда и усиливаться. В нашем опыте при перегревании у бодрствую-

щей  мыши  включался  ряд  защитных  реакций  –  одышка,  расширение  по-

верхностных  сосудов,  усиление  потоотделения.  У  наркотизированной  же 

мыши  эти  защитные  реакции  отсутствуют,  и  она  погибает  значительно 

раньше. 

ОПЫТ 2 

Цель опыта: изучить зависимость реактивности организма от функ-

ционального состояния центральной нервной системы. 

Методика  опыта.  В  одну  колбу  помещают  ненаркотизированную 

мышь (контроль), а в другую – мышь того же веса, но погруженную в глу-

бокий наркотический сон (опыт). 

Колбы  одновременно  закрываются  пробками.  Температура  окру-

жающего воздуха – комнатная. 

Студенты наблюдают за поведением мышей, учитывают продолжи-

тельность их жизни и ведут подробный протокол. 

Результаты их обсуждение. Опыт показывает, что наркоз увеличива-

ет продолжительность жизни мыши при кислородном голодании. Это объ-

ясняется тем, что интенсивность окислительных процессов у наркотизиро-

ванной  мыши  понижена.  Она  меньше  потребляет  кислорода  и  поэтому 

дольше  живет  в  герметически    закрытом сосуде, чем мышь ненаркотизи-

рованная. 

Второй причиной удлинения сроков жизни наркотизированной мы-

ши может быть ее меньшая чувствительность к недостатку кислорода. По 

литературным данным известно, что ненаркотизированная мышь погибает 

при содержании кислорода 7,1%, а наркотизированная – 3,4% кислорода. 

 

ТЕМА: Анафилаксия. 

ОПЫТ 1 

Цель  опыта:  изучение  картины  анафилактического  шока  у  морской 

свинки,  сенсибилизированой  введением  лошадиной  сыворотки  в  брюш-

ную полость. 

Принадлежности  опыта:  морская  свинка,  сенсибилизированная   ло-

шадиной сывороткой, шприц, ножницы, пинцет, вата, йод, лошадиная сы-

воротка. 

Методика опыта. За две недели до опыта морская свинка сенсибили-

зируется,  введением  в  брюшную  полость  или  подкожно  1мл  лошадиной 

сыворотки. Эта первая доза называется сенсибилизирующей. Для получе-

 

24 

ния  шока  вторичное  введение  (разрешающая  инъекция)  можно  произво-

дить несколькими путями: в сердце, брюшную полость, подкожно и др. В 

зависимости от этого картина шока будет различная. 

Результаты опыта и их обсуждение. 

Различают  5  основных  форм  клинического  течения    анафилактиче-

ского  шока:  1)  стертую;  2)  легкую;  3)  средней  тяжести;  4)  тяжелую;           

5) смертельную. 

1.  К  стертой  форме  относят  случаи,  когда  шок  протекает  без  нару-

шений общего состояния со слабо выраженными  симптомами: почесыва-

ние тела, жевательные движения, чихание, иногда периодическое вздраги-

вание всего тела. Такое состояние продолжается 3-5 минут. 

2.  Легкая  форма  шока:  у  животного  ясно  выражено  двигательное  

беспокойство, вздрагивание всего тела, усиленные жевательные движения. 

Иногда животное сидит 3-5 минут нахохлившись, как бы в состоянии не-

которого оглушения, из которого быстро выходит. Эта легкая степень шо-

ка продолжается обычно в течение 15-60 минут, иногда затягивается до 2-

х часов. 

3.  Шок  средней  тяжести:  вскоре  после  введения  сыворотки  живот-

ное впадает в состояние оглушения, которое сменяется двигательным бес-

покойством, или наоборот. Отмечается подскакивание, иногда тонические 

судороги шейных мышц, дефекация. В разгар этих явлений животное то и 

дело меняет позу; то сядет, то ляжет на живот, то встанет и т.д. 

4. К тяжелой степени относят случаи, когда у животных те же сим-

птомы, что и при предыдущей форме, но резче выраженные. Длительность 

от двух до двенадцати часов. 

5.  При  смертельной  форме  шока  различают  молниеносное и затяж-

ное течение. 

При  молниеносном  течении  все  явления  протекают  бурно,  быстро. 

Животное после состояния короткого и резкого возбуждения (или, напро-

тив, глубокого оглушения), сопровождающегося писком, стоном, кашлем, 

чиханием, падает на бок или спину, у него развиваются общие беспрерыв-

ные судороги. Параллельно с этим отмечается дефекация и мочеиспуска-

ние. Животное гибнет в течение 3-30 минут. 

При затяжном течении (растянутый смертельный шок) все эти явле-

ния развиваются медленнее, постепенно, по типу течения тяжелого шока, 

но, как правило, приводят животное к гибели, которая наступает через 8-

24 часа. 

Различные  формы  клинического  течения  анафилактического  шока 

зависят от способа введения разрешающей дозы и реактивности организ-

ма. 

 

ТЕМА: Барьерная роль клеток системы мононуклеарных 

                                                 фагоцитов. 

 

25 

О П Ы Т  1 

Цель  опыта:  установить  способность  клеток  системы  мононуклеар-

ных фагоцитов поглощать введенное в кровь постороннее вещество. 

Оборудование и материалы: препаровальная дощечка, глазные нож-

ницы, пинцеты, фарфоровые чашечки, стеклянные палочки, 1% р-р хлор-

ного железа, 5% р-р соляной кислоты, 5% р-р желтой кровяной соли, дис-

тиллированная вода, лягушки, иглы, шприц 2мл, вата. 

Методика.  Лягушку  обездвиживают  разрушением  спинного  мозга, 

помещают  на  доске  брюшком  кверху.  В  области грудной клетки срезают 

кожу,  затем  пинцетом  приподнимают  грудину,  удаляют  ее  ножницами  и 

открывают доступ к сердцу. С последнего снимают перикард и  захватив 

сердце пинцетом (концы которого обворачивают ватой, чтобы излишне не 

травмировать  сердце),  вводят  шприцем  в  верхушку  сердца  1мл  1%  р-ра 

хлорного железа. Затем  закрывают его влажной ватой. Введенное хлорное 

железо,  вследствие  своей  токсичности,  нередко  останавливает  сердце,  но 

на результат опыта это мало влияет, т.к. для распределения железа по все-

му организму достаточно нескольких сокращений сердца. 

Через 5-10 минут лягушку вскрывают, извлекают печень, селезенку, 

легкое, почки, мозг, вырезают кусочек кожи, кишки, мышц, помещают их 

в фарфоровую чашечку с дистиллированной водой на 3 минуты для отмы-

вания  крови,  затем  стеклянными  палочками  осторожно  переносят  в  ча-

шечку с 5% раствором соляной кислоты (на 3 мин). Кусочки, промытые в 

соляной  кислоте,  переносят  в  чашечку  с  5%  раствором  желтой  кровяной 

соли,  держат  до  появления  (несколько  минут)  окрашивания.  После  этого 

органы размещают на листе белой бумаги по убывающей степени окраски 

и  отмечают  степень  окраски  плюсами.  Сильная  окраска  -  4,  средняя  -  3, 

слабая - 2, едва заметная -1 плюс. Отсутствие окраски - минус. 

Результаты  опыта,  их  обсуждение.  Обычно,  наиболее  сильно  окра-

шенными оказывается печень, селезенка, легкое, затем другие органы, от-

сутствует окраска мышц, мозга. Это связано с содержанием клеток РЭС в 

органах и тканях. Отсутствие окраски мозга и мышц объясняется наличи-

ем  гемато-энцефалического  и  гисто-гематического  барьеров.  Сине-

лазурное окрашивание органов обязано образованию берлинской лазури: 

4FeCI

3

  3К

4

Fe(CN)

6 3

12КCI Fe

4

Fe(CN)

6 3 

желтая кровяная соль    берлинская лазурь 

 

Контрольные вопросы 

1.

 

Что такое физиологическая регуляция функций? 

2.

 

В чѐм проявляется регуляция функций при патологии? 

3.

 

Что такое этиология? 

4.

 

Направления  в  этиологии  (монокаузализм,  кондиционализм, конститу-

ционализм, научный каузализм). 

5.

 

Классификация этиологических факторов. 

6.

 

Что такое патогенез? 

 

26 

7.

 

Основные механизмы возникновения и развития заболеваний. 

8.

 

Пути распространения болезнетворных факторов по организму. 

9.

 

Понятие реактивности и резистентности. 

10.

 

 Факторы, влияющие на реактивность. 

11.

 

 Виды реактивности. 

12.

 

 Что такое аллергия, виды аллергий? 

13.

 

 Что такое аллергены? 

14.

 

 Механизм возникновения аллергических реакций. 

15.

 

 Классификация аллергии. 

16.

 

 Десенсибилизация, виды десенсибилизации. 

17.

 

 Анафилактический шок. 

18.

 

 Специфический и неспецифический иммунитет. 

19.

 

 Что такое иммунитет? 

20.

 

 Что такое антигены, их строение? 

21.

 

 Механизм развития иммунного ответа. 

22.

 

 Классификация иммунитета. 

23.

 

 Что такое антитела, классы антител? 

24.

 

 Аутоиммунные процессы и болезни. 

 

Литература 

1.

 

Лютинский  С.И.  Патологическая  физиология  сельскохозяйственных 

животных. Москва: Колос, 2001. – 495 с. 

2.

 

Зайко  Н.Н.  Патологическая  физиология.  Москва:  Медпрессинформ, 

2002. – 646 с. 

3.

 

Адо  А.Д.,  Новицкий  В.В.  и  др.  Патологическая  физиология.  Томск, 

1994. – 428 с. 

4.

 

Карпуть  И.М.  Иммунология  и  иммунопатология  болезней  молодняка. 

Минск, 1993. – 285 с. 

5.

 

Абрамов С.С., Могиленко А.Ф., Ятусевич А.И. Методические указания 

по определению естественной резистентности и путях ее повышения у 

молодняка сельскохозяйственных животных. Витебск, 1989. – 35 с.